O nas

Zakład Immunoterapii Eksperymentalnej

Zakład Immunoterapii Eksperymentalnej prowadzi prace badawcze i rozwojowe.
Prowadzimy intensywne badania mające m.in. na celu:

  • Opracowanie selektywnych, biologicznych czynników pochodzenia pasożytniczego do zaproponowania w terapii chorób alergicznych, autoimmunizacyjnych, neurodegeneracyjnych i onkologicznych. W badaniach stosujemy podejście „ucząc się od pasożytów” z wykorzystaniem układów in vitro, ex vivo i modeli zwierzęcych.
  • Identyfikację czynników zakaźnych oraz mechanizmów odpowiedzi immunologicznej zaangażowanych w patogenezę chorób neurodegeneracyjnych.
  • Identyfikację i weryfikację klinicznie wartościowych biomarkerów chorób neurodegeneracyjnych, które pozwolą na kwalifikację pacjentów i przewidywanie ich reakcji na terapię.
  • Ocenę właściwości przeciwpasożytniczych związków i substancji pochodzenia naturalnego przeciwko różnym formom rozwojowym nicieni jelitowych.
Kierownik Zakładu
Absolwentka studiów doktoranckich w Zakładzie Parazytologii Wydziału Biologii Uniwersytetu Warszawskiego. Wieloletni nauczyciel akademicki. Autorka oryginalnych i przeglądowych prac naukowych dotyczących m.in. mechanizmów immunoregulacyjnych wzbudzanych…
Adiunkt
Absolwentka Wydziału Biologii Uniwersytetu Warszawskiego. W 2021 roku obroniła z wyróżnieniem pracę doktorską w tematyce immunoparazytologii. Biolog z wieloletnim doświadczeniem w technikach parazytologicznych, immunologicznych,…
Adiunkt
Absolwentka Wydziału Biologii Uniwersytetu Warszawskiego, gdzie następnie w 2018 roku obroniła z wyróżnieniem pracę doktorską. Od lat prowadzi badania naukowe w dziedzinie immunologii i…

Laboratoria i wykorzystywane metody badawcze

Zakład dysponuje specjalistycznymi laboratoriami o statusie Zakładu Inżynierii Genetycznej GMM klasy II oraz Laboratorium Referencyjnym Cytometrii Przepływowej.

Analiza fenotypu i aktywności komórek, cytotoksyczność:

  • Cytometria przepływowa (cytometr CytoFlex S, pomiar 13 fluorescencji)
  • Sortowanie metodą cytometrii przepływowej (sorter CytoFlex SRT)
  • Metoda separacji pozytywnej/negatywnej na kulkach magnetycznych
  • ELISA, ELISPOT, testy immunoenzymatyczne (fluorescencja, luminescencja, kolorymetria), MTT, MTS etc.
  • Mikroskopia fluorescencyjna

Obrazowanie i charakteryzacja mikroskopowa komórek i skrawków:

  • Mikroskopia świetlna i fluorescencyjna
  • Immunohistochemia komórek i tkanek

Analiza genomiczna i proteomiczna:

  • Sekwencjonowania pojedynczej komórki scRNA-seq
  • RT-PCR, dd-PCR
  • Elektroforeza 1D i 2D
  • Western-blot
  • Protein Array
  • Systemy reporterowe

Modele in vivo:

  • Mysi model stwardnienie rozsianego (EAE)
  • Mysi model choroby Leśniowskiego-Crohna (TNBS)
  • Mysi model colitis ulcerosa (DSS)
  • Mysi model zarażenia tęgoryjcem (Heligmosomoides polygyrus)

Hodowle in vitro komórek pierwotnych i linii komórkowych (ludzkie, mysie, szczurze):

  • Makrofagi, limfocyty T, komórki dendrytyczne
  • Komórki tuczne linii HMC 1.1./ HMC 1.2/ RBL
  • Komórki dendrytyczne linii JAWSII
  • Limfocyty T linii EL-4
  • Komórki nowotworowe, nabłonkowe linii HeLa
  • Komórki nowotworowe, epitelialne linii Caco-2
  • Linie nowotworów hematologicznych linii DLBCL (TMD8, U2932, DHL4, Ly1, Ramos, Raji), cHL (L428, SUP HD1, HDLM2), AML (KG1, MOLM14, MOLM16, Kasumi, HEL), T-ALL (Jurkat)
  • Rak wątrobowokomórkowy linii HepG2
  • Komórki epitelialne linii Thle-2